Analiza białek
Informacje ogólne
Kod przedmiotu: | 2600-BK-ABBIOL-2-S2 |
Kod Erasmus / ISCED: |
(brak danych)
/
(0511) Biologia
|
Nazwa przedmiotu: | Analiza białek |
Jednostka: | Wydział Nauk Biologicznych i Weterynaryjnych |
Grupy: | |
Punkty ECTS i inne: |
6.00
|
Język prowadzenia: | polski |
Wymagania wstępne: | Wiadomości z dziedziny biochemii, genetyki molekularnej oraz podstaw bioinformatyki |
Rodzaj przedmiotu: | przedmiot obowiązkowy |
Całkowity nakład pracy studenta: | Godziny realizowane z udziałem nauczycieli (75 godz.): - udział w wykładach - 15 - udział w ćwiczeniach laboratoryjnych - 60 Czas poświęcony na pracę indywidualną studenta (105 godz.): - przygotowanie do zaliczenia - 50 - przygotowanie do ćwiczeń - 40 - praca własna nad opracowaniami - 10 - udział w konsultacjach – 5 Łącznie: 180 godz. (6 ECTS) |
Efekty uczenia się - wiedza: | W1 - opisuje właściwości aminokwasów i strukturę białek charakteryzując przy tym ich funkcje biologiczne; K_W05 W2 - wyjaśnia przebieg kluczowych procesów związanych z metabolizmem białek; K_W01,04 W3 - zna i rozumie molekularne podstawy funkcjonowania komórek prokariotycznych i eukariotycznych; K_W02, W4 - tłumaczy specyfikę procesów biologicznych; K_W02, 04, 11 W5 - zna sposoby projektowania białek o znanej lub nowej strukturze i funkcji; K_W09, 11 W6 - wykazuje znajomość podstawowych technik i narzędzi w badaniach zjawisk przyrodniczych w zakresie analizy białek; K_W09, 10 W7 - zna podstawy technik informatycznych i wykorzystuje narzędzia informatyczne do pozyskiwania informacji z baz danych; K_W 08, 17 |
Efekty uczenia się - umiejętności: | U01 - stosuje podstawowe techniki analizy białek; K_U02, 07 U02 - potrafi obsługiwać urządzenia pomiarowe i narzędzia laboratoryjne stosowane w biochemii i biologii molekularnej; K_U03 U03 - wykazuje umiejętność wykorzystania podstawowych baz danych, artykułów naukowych oraz sekwencji DNA i białek; K_U04 U04 - przeprowadza doświadczenia i analizy z zakresu biologii białek w obecności opiekuna; K_U08, 09, U05 - wykorzystuje techniki biologii molekularnej i biochemii do produkcji białek rekombinowanych; K_U 08, 09, U06 - planuje proces wytwarzania nowego produktu; K_U07, 10 U07 - wykazuje umiejętność interpretacji wyników i poprawnego wnioskowania na podstawie danych eksperymentalnych; K_U07, 08 U08 umie sporządzić raport i zaprezentować wyniki; K_U08, 15 U09 korzysta z fachowej literatury; K_U 09, 11, 12 |
Efekty uczenia się - kompetencje społeczne: | K01 - wykazuje odpowiedzialność za bezpieczeństwo pracy własnej i innych; K_K09 K02 - wykazuje odpowiedzialność za powierzony sprzęt w laboratorium biologii molekularnej; K_K10 K03 - wykazuje zdolność do efektywnego wykonywania pracy doświadczalnej w zespole; K_K11 K04 - systematycznie aktualizuje swoja wiedzę i ma świadomość jej praktycznego zastosowania; K_K01, 02 K05 potrafi określać priorytety oraz identyfikować i rozstrzygać dylematy związane z realizacją określonego zadania; K_K04, 07 K06 - dostrzega konieczność stosowania metod ekonomicznych i zasad etycznych w organizacji procesów z wykorzystaniem białek; K_K05 |
Metody dydaktyczne: | Metody dydaktyczne podające – Wykład informacyjny z elementami wykładu problemowego Metody dydaktyczne aktywizujące - Ćwiczenia laboratoryjne – ilustratywne i badawcze w oparciu o pisemne instrukcje; studenci realizują zadania indywidualnie i/lub w grupach; zajęcia są prowadzone w grupie 8-12 osób, gdyż wymaga tego metodyka doświadczeń: dostęp do sprzętu i urządzeń laboratoryjnych, a także praca z odczynnikami chemicznymi |
Metody dydaktyczne podające: | - wykład problemowy |
Skrócony opis: |
Celem przedmiotu jest poznanie metod analizy białek stosowanych podczas ich produkcji, oczyszczania i w etapie poprodukcyjnym. Treści wykładu obejmują: wiadomości podstawowe dotyczące budowy aminokwasów i białek z uwzględnieniem cech fizyko-chemicznych jako wykładników w ich analizie; teoretyczne podstawy produkcji białek, metody izolacji, separacji i oczyszczania białek, metody analizy ilościowej i jakościowej, sposoby identyfikacji modyfikacji potranslacyjnych, podstawy badań oddziaływań białko-białko, metody in silico ustalania struktury przestrzennej białek, dokowania ligandów. Ćwiczenia laboratoryjne obejmują: produkcję białka rekombinowanego w bakteryjnym systemie ekspresyjnym, oczyszczanie białka fuzyjnego metodą chromatografii powinowactwa, analizę jakościowa i ilościową otrzymanego preparatu metodami spektrometrii UV-Vis i elektroforetycznymi, detekcję rekombinowanego białka metodą Western blottingu |
Pełny opis: |
Wiedza teoretyczna obejmuje: 1. Podstawowe wiadomości na temat translacji białek in vivo 2. Budowa aminokwasów i białek; cechy fizyczne i chemiczne 3. Techniki analizy białek, a ich właściwości 4. Metody in silco jako narzędzie wspomagające analizę białek 5. Metody in vitro stosowane w produkcji białek 6. Bioprocesy, jako nowe narzędzie w produkcji białek 7. Wprowadzenie do podstawowych problemów i technik inżynierii genetycznej 8. Projektowanie oraz wytwarzanie białek o zmodyfikowanej strukturze i/lub funkcji 9. Wykorzystanie prokariotycznych systemów ekspresyjnych do syntezy białek 10. Metody oczyszczania i analizy białek: metody chromatograficzne i elektroforetyczne, immunologiczne, metody fizykochemiczne (sekwencjonowanie, krystalizacja, dichroizm kołowy, powierzchniowy rezonans plazmonów, mikrokalorymetria różnicowa) oraz sposoby detekcji modyfikacji potranslacyjnych i oddziaływań białko-białko. Ćwiczenia praktyczne obejmują: 1. Przeprowadzenie produkcji białek eukariotycznych w bakteryjnym systemie ekspresyjnym (przygotowanie pożywek, transformacja, prowadzenie hodowli), 2. Izolację i oczyszczanie białka rekombinowanego metodą chromatografii powinowactwa 3. Ilościowe oznaczanie oczyszczonego białka (spektrofotometria UV-Vis) 4. Analiza jakościowa – elektroforeza otrzymanego białka (Native-PAGE, SDS-PAGE, Western blotting) |
Literatura: |
Literatura podstawowa: Doonan S 2010. Białka i peptydy. Wydawnictwo PWN Praca zbiorowa. 2005. Materiały do ćwiczeń z biochemii. Białka – metody ilościowego oznaczania, rozdziału i oczyszczania. Wyd. UMK Ślósarek G. 2012. Biofizyka molekularna. Ratledge C, Kristiansen B. 2011. Podstawy biotechnologii. PWN Kłyszejko-Stefanowicz L. 2005. Ćwiczenia z biochemii. PWN Turner P.C., McLennan A.G., Bates A.D., White M.R.H., 2007. Krótkie wykłady. Biologia molekularna. Wydanie drugie. Wydawnictwo Naukowe PWN. Staroń A., Grabowska A., Jagusztyn-Krynicka E. K., 2008. Nadprodukcja i oczyszczanie rekombinowanych, heterologicznych białek w komórkach Escherichia coli. Postępy Mikrobiologii 47 (2): 83-95. Nuc P., Nuc K., 2006. Produkcja rekombinowanych białek w Escherichia coli. Postępy Biochemii 52 (4) 448-456. Literatura uzupełniająca: Gellissen G (Ed., 2005. Production of Recombinant Proteins, WILEY-VCh Verlag GmbH & Co. KGaA http://www.molecularfarming.com/ http://www.e-biotechnologia.pl/Artykuly/Bialka-rekombinowane/ |
Metody i kryteria oceniania: |
Wykład – ocena sumująca wiedzę K_W01, 02, 04, 05, 08, 09, 11, 17 Ćwiczenia – ocena sumująca wiedzę K_W 01, 02, 04, 05, 08, 09, 11, 17 Ocena sumująca umiejętności i kompetencje – K_U02, 03, 04, 07, 08, 09, 10, 11, 12, 15 K_K01, 02, 04, 05, 07, 09, 10, 11 Kryteria oceniania Zaliczenie wykładów: warunkiem dopuszczającym do zaliczenia jest zaliczenie ćwiczeń składających się na dany przedmiot; dopuszczalne formy egzaminu: opracowanie problemu lub test pojedynczego wyboru; test wielokrotnego wyboru; pytania opisowe), czas trwania egzaminu: 120 min; wymagany próg na ocenę dostateczną - 55-60%, dostateczny plus - 61-70%, dobry - 71-80%, dobry plus 81-90%, bardzo dobry - 91-100%. Ćwiczenia laboratoryjne: warunkiem uzyskania zaliczenia jest obecność na wszystkich zajęciach; pisemne opracowanie obejmujące tematykę realizowaną na zajęciach (70%), ocena ciągła (bieżące przygotowanie studentów do zajęć i opracowania (20%), aktywność na zajęciach (10%); wymagany próg na ocenę dostateczną - 55-60%, dostateczny plus - 61-70%, dobry - 71-80%, dobry plus 81-90%, bardzo dobry - 91-100% . |
Praktyki zawodowe: |
nie dotyczy |
Zajęcia w cyklu "Semestr letni 2022/23" (zakończony)
Okres: | 2023-02-20 - 2023-09-30 |
Przejdź do planu
PN WYK
LAB
WT LAB
ŚR CZ LAB
PT |
Typ zajęć: |
Laboratorium, 60 godzin
Wykład, 15 godzin
|
|
Koordynatorzy: | Krzysztof Jaworski, Maciej Ostrowski | |
Prowadzący grup: | Anna Ciarkowska, Krzysztof Jaworski, Mateusz Kwiatkowski, Maciej Ostrowski | |
Lista studentów: | (nie masz dostępu) | |
Zaliczenie: | Zaliczenie na ocenę |
Właścicielem praw autorskich jest Uniwersytet Mikołaja Kopernika w Toruniu.