Metody analizy białek
Informacje ogólne
Kod przedmiotu: | 2600-DM-MAB-1-S2 |
Kod Erasmus / ISCED: |
(brak danych)
/
(0511) Biologia
|
Nazwa przedmiotu: | Metody analizy białek |
Jednostka: | Wydział Nauk Biologicznych i Weterynaryjnych |
Grupy: | |
Punkty ECTS i inne: |
5.00
|
Język prowadzenia: | polski |
Wymagania wstępne: | Zaliczone kursy z biochemii i immunologii |
Rodzaj przedmiotu: | przedmiot obligatoryjny |
Całkowity nakład pracy studenta: | Godziny realizowane z udziałem nauczycieli 30: - udział w wykładach - 10 - udział w ćwiczeniach laboratoryjnych - 20 Czas poświęcony na pracę indywidualną studenta: 95 (przygotowanie do ćwiczeń, kolokwiów, opracowania prezentacji, konsultacje, przygotowanie do egzaminu i obecność na egzaminie) Łącznie: 125 godzin (5 ECTS) |
Efekty uczenia się - wiedza: | W1: Definiuje pojęcia: antygen, przeciwciało, immunogen, hapten, połączenie krzyżowe – K_W08, K_W17 W2: zna budowę i właściwości białek wykorzystywanych do ich identyfikacji i izolacji – K_W06, K-W08, K_W13 W3: Opisuje metody wykorzystywane do ilościowej i jakościowej analizy białek – K_W01, K_W06, K_W012, K_W17, K_W21 W4: Zna mechanizmy interakcji antygen-przeciwciało oraz ich zastosowanie w analizie ilościowej i jakościowej białek – K_W01, K_W06, K_W12 W5: Zna budowę i właściwości enzymów oraz mechanizm katalizy enzymatycznej – K_W06, K_W08, |
Efekty uczenia się - umiejętności: | U1: Posiada umiejętność planowania eksperymentów z wykorzystaniem interakcji immunologicznych zachodzących pomiędzy antygenem a przeciwciałem – K_U01, K_U04, K_U05, K_U11, K_U12, K_U13, K_U16, K_U19 U2: Posiada umiejętność przeprowadzania analizy ilościowej i jakościowej białek w zespole – K_U02 U3: Charakteryzuje poszczególne etapy procedur związanych z ilościową i jakościową analizą białek – K_U13, K_U19 U4: Zna metody elektroforetyczne, chromatograficzne i enzymatyczne stosowane w wykrywaniu, izolacji i charakterystyce białek – K_U01, K_U04, K_U05, K_U015 |
Efekty uczenia się - kompetencje społeczne: | K1: Rozumie potrzebę ustawicznego pogłębiania wiedzy na temat metod analizy ilościowej i jakościowej białek – K_K05 K2: Ma świadomość znaczenia testów związanych z analizą białek dla przemysłu i służby zdrowia- K_K06 K3: Krytycznie analizuje wyniki przeprowadzonych analiz białek – K_K10 |
Metody dydaktyczne: | Wykład: wykład informacyjny z prezentacjami multimedialnymi. Ćwiczenia mają charakter doświadczalny (studenci realizują zadania w zespołach 2-3-osobowych). Zajęcia muszą być prowadzone w grupie nie więcej niż 8-12 osób, ponieważ wymaga tego metodyka doświadczeń: dostęp do sprzętu i urządzeń laboratoryjnych, a także praca z odczynnikami chemicznymi. |
Metody dydaktyczne podające: | - wykład informacyjny (konwencjonalny) |
Metody dydaktyczne poszukujące: | - laboratoryjna |
Skrócony opis: |
Celem przedmiotu jest zdobycie wiedzy na temat ilościowych i jakościowych metod analizy białek wykorzystujących chemiczne właściwości białek oraz interakcje antygen-przeciwciało. |
Pełny opis: |
Przedmiot realizowany jest w formie wykładów i ćwiczeń. Wykład – treści dotyczą technik stosowanych w biochemii białek opartych na ich właściwościach chemicznych (wielkość, ładunek, rozpuszczalność, powinowactwo wiązania, aktywność katalityczna). Omówione zostaną następujące zagadnienia: metody wstępnego frakcjonowania białek (iizolacja z tkanki, wysalanie i dializa białek), chromatografia metodą filtracji żelowej, chromatografia jonowymienna, hydrofobowa, powinowactwa, wysokociśnieniowa chromatografia cieczowa (HPLC); metody elektroforetyczne: elektroforeza natywna i w warunkach denaturujących, ogniskowanie izoelektryczne i elektroforeza dwukierunkowa; techniki immunochemicznei spektrofotometryczne. Metody badania oddziaływań między białkami (dwuhybrydowy system drożdżowy, system rozszczepionej ubikwityny, powierzchniowy rezonans plazmonowy). Ćwiczenia laboratoryjne poświęcone są: - zagadnieniom obejmującym interakcje antygen-przeciwciało ze szczególnym uwzględnieniem ich znaczenia diagnostycznego i potencjalnego zastosowania w przemyśle. Szczegółowo omówione zostanie podłoże teoretyczne technik analizy ilościowej i jakościowej białek, takich jak test immunoenzymatyczny ELISA oraz Western blot - metodom wykrywania i oznaczanie aktywności enzymów markerowych na przykładzie dehydrogenazy mleczanowej (LDH) oraz transaminazy alaninowej (elektroforeza, zymogram) - analizie zmian kinetyki enzymów pod wpływem inhibitorów Studenci uzyskają praktyczną umiejętność samodzielnego wykonania testów i analiz oraz interpretacji i sporządzenia dokumentacji uzyskanych wyników. |
Literatura: |
Literatura podstawowa: - Roitt I., Brostoff J. Male D. Immunologia. PZWL 2000 i nowsze; - Gołąb J., Jakóbisiak M., Lasek W. Immunologia. PWN 2004 i nowsze; - Buczek J., Deptuła W., Gliński Z., Jarosz J., Stosik M., Wernicki A. Immunologia porównawcza i rozwojowa zwierząt. PWN 2000; UJ 1998. - Czarkowska-Pączek B., Przybylski J. Zarys fizjologii wysiłku fizycznego. Podręcznik dla studentów. Elsevier Urban & Partner.2005 - Stryer L, Tymoczko JL, Berg JM. Biochemia. PWN 2007, 2009, 2011, 2018 - Murray RK, Granner DK, Rodwell VW. Biochemia Harpera. PZWL, 2008 - Bańkowski E. Biochemia. Podręcznik dla studentów uczelni medycznych. Elsevier Urban&Partner. Wrocław 2010 Literatura uzupełniająca: - Deptuła W., Buczek J. Zarys immunologii ssaków 1998; - Płytycz B., Gliński Z., Jarosz J., Książkiewicz-Kapralska M., Markowska M., Skwarło-Sońta K. Immunologia porównawcza 1999 - Playfair J. H. L., Chain B. M. Immunologia w zarysie 2005 - Kurowski M., Kowalski M.L. Wpływ wysiłku fizycznego na odpowiedź immunologiczną – wybrane zagadnienia. Alergia Astma Immunologia 2014, 19 (3): 144-149 - Koolman J, Röhm K-H. Biochemia. Ilustrowany przewodnik. Wydawnictwo Lekarskie PZWL, 2005 |
Metody i kryteria oceniania: |
Metoda oceniania: - zaliczenie na ocenę (ćwiczenia laboratoryjne) - egzamin (wykład) Kryteria oceniania: wymagany próg na ocenę dostateczną: 50-60%, 61-70% dostateczny plus, 71-80% - dobry, 81-90% - dobry plus, 91-100% - bardzo dobry |
Praktyki zawodowe: |
nie dotyczy |
Zajęcia w cyklu "Semestr letni 2022/23" (zakończony)
Okres: | 2023-02-20 - 2023-09-30 |
Przejdź do planu
PN WYK
WT ŚR CZ LAB
PT |
Typ zajęć: |
Laboratorium, 20 godzin
Wykład, 10 godzin
|
|
Koordynatorzy: | Anna Hetmann, Tomasz Jędrzejewski | |
Prowadzący grup: | Anna Hetmann, Tomasz Jędrzejewski, Barbara Wojczuk, Sylwia Wrotek | |
Lista studentów: | (nie masz dostępu) | |
Zaliczenie: | Egzamin | |
Skrócony opis: |
Celem przedmiotu jest zdobycie wiedzy na temat ilościowych i jakościowych metod analizy białek wykorzystujących chemiczne właściwości białek oraz interakcje antygen-przeciwciało. W ramach ćwiczeń laboratoryjnych studenci zapoznają się z technikami, takimi jak: test immunoenzymatyczny ELISA oraz Western blot, elektroforeza białek, chromatografia hydrofobowa i powinowactwa. Studenci poznają współczesne techniki laboratoryjne, nabywają umiejętności planowania i samodzielnego prowadzenia doświadczeń oraz opracowania i interpretacji wyników. Powinni być przygotowani do podjęcia pracy o charakterze eksperymentalnym i laboratoryjnym. |
|
Pełny opis: |
Przedmiot realizowany jest w formie wykładów i ćwiczeń. Wykład – treści dotyczą technik stosowanych w biochemii białek opartych na ich właściwościach chemicznych (wielkość, ładunek, rozpuszczalność, powinowactwo wiązania, aktywność katalityczna). Omówione zostaną następujące zagadnienia: wysalanie białek, chromatografia metodą filtracji żelowej, chromatografia jonowymienna, hydrofobowa, powinowactwa, wysokociśnieniowa chromatografia cieczowa (HPLC). Metody elektroforetyczne: elektroforeza natywna i w warunkach denaturujących, ogniskowanie izoelektryczne i elektroforeza dwukierunkowa. Techniki immunochemiczne. Metody badania oddziaływań między białkami. Ćwiczenia laboratoryjne poświęcone są: - zagadnieniom obejmującym interakcje antygen-przeciwciało ze szczególnym uwzględnieniem ich znaczenia diagnostycznego i potencjalnego zastosowania w przemyśle. Szczegółowo omówione zostanie podłoże teoretyczne technik analizy ilościowej i jakościowej białek, takich jak test immunoenzymatyczny ELISA oraz Western blot. - enzymatycznym metodom ilościowego oznaczania metabolitów na przykładzie oznaczania glukozy - metodom wykrywania i oznaczanie aktywności enzymów markerowych na przykładzie dehydrogenazy mleczanowej (LDH) oraz transaminazy alaninowej (elektroforeza, zymogram) - analizie zmian kinetyki enzymów pod wpływem inhibitorów Studenci uzyskają praktyczną umiejętność samodzielnego wykonania testów i analiz oraz interpretacji i sporządzenia dokumentacji uzyskanych wyników. |
|
Literatura: |
Literatura podstawowa: - Roitt I., Brostoff J. Male D. Immunologia. PZWL 2000 i nowsze; - Gołąb J., Jakóbisiak M., Lasek W. Immunologia. PWN 2004 i nowsze; - Buczek J., Deptuła W., Gliński Z., Jarosz J., Stosik M., Wernicki A. Immunologia porównawcza i rozwojowa zwierząt. PWN 2000; UJ 1998. - Czarkowska-Pączek B., Przybylski J. Zarys fizjologii wysiłku fizycznego. Podręcznik dla studentów. Elsevier Urban & Partner.2005 - Stryer L, Tymoczko JL, Berg JM. Biochemia. PWN 2007, 2009, 2011 - Murray RK, Granner DK, Rodwell VW. Biochemia Harpera. PZWL, 2008 - Bańkowski E. Biochemia. Podręcznik dla studentów uczelni medycznych. Elsevier Urban&Partner. Wrocław 2010 Literatura uzupełniająca: - Deptuła W., Buczek J. Zarys immunologii ssaków 1998; - Płytycz B., Gliński Z., Jarosz J., Książkiewicz-Kapralska M., Markowska M., Skwarło-Sońta K. Immunologia porównawcza 1999 - Playfair J. H. L., Chain B. M. Immunologia w zarysie 2005 - Kurowski M., Kowalski M.L. Wpływ wysiłku fizycznego na odpowiedź immunologiczną – wybrane zagadnienia. Alergia Astma Immunologia 2014, 19 (3): 144-149 - Koolman J, Röhm K-H. Biochemia. Ilustrowany przewodnik. Wydawnictwo Lekarskie PZWL, 2005 |
Zajęcia w cyklu "Semestr letni 2023/24" (zakończony)
Okres: | 2024-02-20 - 2024-09-30 |
Przejdź do planu
PN WYK
WT ŚR CZ LAB
PT |
Typ zajęć: |
Laboratorium, 20 godzin
Wykład, 10 godzin
|
|
Koordynatorzy: | Anna Hetmann, Tomasz Jędrzejewski | |
Prowadzący grup: | Anna Hetmann, Tomasz Jędrzejewski, Barbara Wojczuk, Sylwia Wrotek | |
Lista studentów: | (nie masz dostępu) | |
Zaliczenie: | Egzamin | |
Skrócony opis: |
Celem przedmiotu jest zdobycie wiedzy na temat ilościowych i jakościowych metod analizy białek wykorzystujących chemiczne właściwości białek oraz interakcje antygen-przeciwciało. W ramach ćwiczeń laboratoryjnych studenci zapoznają się z technikami, takimi jak: test immunoenzymatyczny ELISA oraz Western blot, elektroforeza białek, chromatografia hydrofobowa i powinowactwa. Studenci poznają współczesne techniki laboratoryjne, nabywają umiejętności planowania i samodzielnego prowadzenia doświadczeń oraz opracowania i interpretacji wyników. Powinni być przygotowani do podjęcia pracy o charakterze eksperymentalnym i laboratoryjnym. |
|
Pełny opis: |
Przedmiot realizowany jest w formie wykładów i ćwiczeń. Wykład – treści dotyczą technik stosowanych w biochemii białek opartych na ich właściwościach chemicznych (wielkość, ładunek, rozpuszczalność, powinowactwo wiązania, aktywność katalityczna). Omówione zostaną następujące zagadnienia: wysalanie białek, chromatografia metodą filtracji żelowej, chromatografia jonowymienna, hydrofobowa, powinowactwa, wysokociśnieniowa chromatografia cieczowa (HPLC). Metody elektroforetyczne: elektroforeza natywna i w warunkach denaturujących, ogniskowanie izoelektryczne i elektroforeza dwukierunkowa. Techniki immunochemiczne. Metody badania oddziaływań między białkami. Ćwiczenia laboratoryjne poświęcone są: - zagadnieniom obejmującym interakcje antygen-przeciwciało ze szczególnym uwzględnieniem ich znaczenia diagnostycznego i potencjalnego zastosowania w przemyśle. Szczegółowo omówione zostanie podłoże teoretyczne technik analizy ilościowej i jakościowej białek, takich jak test immunoenzymatyczny ELISA oraz Western blot. - enzymatycznym metodom ilościowego oznaczania metabolitów na przykładzie oznaczania glukozy - metodom wykrywania i oznaczanie aktywności enzymów markerowych na przykładzie dehydrogenazy mleczanowej (LDH) oraz transaminazy alaninowej (elektroforeza, zymogram) - analizie zmian kinetyki enzymów pod wpływem inhibitorów Studenci uzyskają praktyczną umiejętność samodzielnego wykonania testów i analiz oraz interpretacji i sporządzenia dokumentacji uzyskanych wyników. |
|
Literatura: |
Literatura podstawowa: - Roitt I., Brostoff J. Male D. Immunologia. PZWL 2000 i nowsze; - Gołąb J., Jakóbisiak M., Lasek W. Immunologia. PWN 2004 i nowsze; - Buczek J., Deptuła W., Gliński Z., Jarosz J., Stosik M., Wernicki A. Immunologia porównawcza i rozwojowa zwierząt. PWN 2000; UJ 1998. - Czarkowska-Pączek B., Przybylski J. Zarys fizjologii wysiłku fizycznego. Podręcznik dla studentów. Elsevier Urban & Partner.2005 - Stryer L, Tymoczko JL, Berg JM. Biochemia. PWN 2007, 2009, 2011 - Murray RK, Granner DK, Rodwell VW. Biochemia Harpera. PZWL, 2008 - Bańkowski E. Biochemia. Podręcznik dla studentów uczelni medycznych. Elsevier Urban&Partner. Wrocław 2010 Literatura uzupełniająca: - Deptuła W., Buczek J. Zarys immunologii ssaków 1998; - Płytycz B., Gliński Z., Jarosz J., Książkiewicz-Kapralska M., Markowska M., Skwarło-Sońta K. Immunologia porównawcza 1999 - Playfair J. H. L., Chain B. M. Immunologia w zarysie 2005 - Kurowski M., Kowalski M.L. Wpływ wysiłku fizycznego na odpowiedź immunologiczną – wybrane zagadnienia. Alergia Astma Immunologia 2014, 19 (3): 144-149 - Koolman J, Röhm K-H. Biochemia. Ilustrowany przewodnik. Wydawnictwo Lekarskie PZWL, 2005 |
Zajęcia w cyklu "Semestr letni 2024/25" (w trakcie)
Okres: | 2025-02-24 - 2025-09-20 |
Przejdź do planu
PN WT ŚR WYK
CZ LAB
LAB
PT |
Typ zajęć: |
Laboratorium, 20 godzin
Wykład, 10 godzin
|
|
Koordynatorzy: | Anna Hetmann, Tomasz Jędrzejewski | |
Prowadzący grup: | Anna Hetmann, Tomasz Jędrzejewski, Sylwia Wrotek | |
Lista studentów: | (nie masz dostępu) | |
Zaliczenie: | Egzamin | |
Skrócony opis: |
Celem przedmiotu jest zdobycie wiedzy na temat ilościowych i jakościowych metod analizy białek wykorzystujących chemiczne właściwości białek oraz interakcje antygen-przeciwciało. W ramach ćwiczeń laboratoryjnych studenci zapoznają się z technikami, takimi jak: test immunoenzymatyczny ELISA oraz Western blot, elektroforeza białek, chromatografia hydrofobowa i powinowactwa. Studenci poznają współczesne techniki laboratoryjne, nabywają umiejętności planowania i samodzielnego prowadzenia doświadczeń oraz opracowania i interpretacji wyników. Powinni być przygotowani do podjęcia pracy o charakterze eksperymentalnym i laboratoryjnym. |
|
Pełny opis: |
Przedmiot realizowany jest w formie wykładów i ćwiczeń. Wykład – treści dotyczą technik stosowanych w biochemii białek opartych na ich właściwościach chemicznych (wielkość, ładunek, rozpuszczalność, powinowactwo wiązania, aktywność katalityczna). Omówione zostaną następujące zagadnienia: wysalanie białek, chromatografia metodą filtracji żelowej, chromatografia jonowymienna, hydrofobowa, powinowactwa, wysokociśnieniowa chromatografia cieczowa (HPLC). Metody elektroforetyczne: elektroforeza natywna i w warunkach denaturujących, ogniskowanie izoelektryczne i elektroforeza dwukierunkowa. Techniki immunochemiczne. Metody badania oddziaływań między białkami. Ćwiczenia laboratoryjne poświęcone są: - zagadnieniom obejmującym interakcje antygen-przeciwciało ze szczególnym uwzględnieniem ich znaczenia diagnostycznego i potencjalnego zastosowania w przemyśle. Szczegółowo omówione zostanie podłoże teoretyczne technik analizy ilościowej i jakościowej białek, takich jak test immunoenzymatyczny ELISA oraz Western blot. - enzymatycznym metodom ilościowego oznaczania metabolitów na przykładzie oznaczania glukozy - metodom wykrywania i oznaczanie aktywności enzymów markerowych na przykładzie dehydrogenazy mleczanowej (LDH) oraz transaminazy alaninowej (elektroforeza, zymogram) - analizie zmian kinetyki enzymów pod wpływem inhibitorów Studenci uzyskają praktyczną umiejętność samodzielnego wykonania testów i analiz oraz interpretacji i sporządzenia dokumentacji uzyskanych wyników. |
|
Literatura: |
Literatura podstawowa: - Roitt I., Brostoff J. Male D. Immunologia. PZWL 2000 i nowsze; - Gołąb J., Jakóbisiak M., Lasek W. Immunologia. PWN 2004 i nowsze; - Buczek J., Deptuła W., Gliński Z., Jarosz J., Stosik M., Wernicki A. Immunologia porównawcza i rozwojowa zwierząt. PWN 2000; UJ 1998. - Czarkowska-Pączek B., Przybylski J. Zarys fizjologii wysiłku fizycznego. Podręcznik dla studentów. Elsevier Urban & Partner.2005 - Stryer L, Tymoczko JL, Berg JM. Biochemia. PWN 2007, 2009, 2011 - Murray RK, Granner DK, Rodwell VW. Biochemia Harpera. PZWL, 2008 - Bańkowski E. Biochemia. Podręcznik dla studentów uczelni medycznych. Elsevier Urban&Partner. Wrocław 2010 Literatura uzupełniająca: - Deptuła W., Buczek J. Zarys immunologii ssaków 1998; - Płytycz B., Gliński Z., Jarosz J., Książkiewicz-Kapralska M., Markowska M., Skwarło-Sońta K. Immunologia porównawcza 1999 - Playfair J. H. L., Chain B. M. Immunologia w zarysie 2005 - Kurowski M., Kowalski M.L. Wpływ wysiłku fizycznego na odpowiedź immunologiczną – wybrane zagadnienia. Alergia Astma Immunologia 2014, 19 (3): 144-149 - Koolman J, Röhm K-H. Biochemia. Ilustrowany przewodnik. Wydawnictwo Lekarskie PZWL, 2005 |
Właścicielem praw autorskich jest Uniwersytet Mikołaja Kopernika w Toruniu.